Preview

Туберкулез и болезни легких

Расширенный поиск

Биомаркеры и иммунологические тесты. Экспериментально-клинические параллели латентной туберкулезной инфекции

https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-8-63-74

Полный текст:

Аннотация

В обзоре использовано 94 источника литературы. Описаны эксперименты, проведенные на макаках Cynomolgus, по латентной туберкулезной инфекции. Отмечено, что в последние годы для идентификации грудных лимфатических узлов (ЛУ), инфицированных микобактериями туберкулеза (МБТ), стали применять ПЭТ-КТ. Показано, что с помощью ФДГ-ПЭТ-КТ можно судить о наличии жизнеспособных МБТ в торакальных ЛУ при латентной туберкулезной инфекции, что подтверждается культуральным определением живых МБТ в гранулемах этих ЛУ. Использование превентивной терапии способствует существенному сокращению видимой патологии при ПЭТ-КТ. В обзоре анализируются публикации, где в эксперименте показан спектр иммунного ответа на специфичные для МБТ белки ESAT-6 и CFP10 при туберкулезной инфекции, в частности связь между цитокиновым ответом и бактериальной нагрузкой.

Об авторе

Д. А. Кудлай
ФГБУ «Государственный научный центр «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства; ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И. М. Сеченова МЗ РФ
Россия

Кудлай Дмитрий Анатольевич, доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник лаборатории персонализированной медицины и молекулярной иммунологии; профессор кафедры фармакологии Института фармации

115478, Москва, Каширское шоссе, д. 24

119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Tel.: +7 (499) 617-10-27



Список литературы

1. Бармина Н. А., Барышникова Л. А., Шурыгин А. А., Рейхардт В. В. Скрининговое обследование детей и подростков III, IV и V групп здоровья с применением нового диагностического теста // Туб. и болезни легких. ‒ 2015. ‒ № 5. ‒ С. 40-41.

2. Борисов С. Е., Лукина Г. В., Слогоцкая Л. В. и др. Скрининг и мониторинг туберкулезной инфекции у ревматологических больных, получающих генно-инженерные биологические препараты // Туб. и болезни легких. ‒ 2011. ‒ № 6. ‒ С. 42-50.

3. Долженко Е. Н., Шейкис Е. Г., Серегина И. В. Диагностические возможности аллергена туберкулезного рекомбинантного в скрининг-диагностике туберкулезной инфекции у детей подросткового возраста в Рязанской области // Туб. и болезни легких. ‒ 2015. ‒ № 6. ‒ С. 56-57.

4. Синицын М. В. Совершенствование противотуберкулезной помощи больным ВИЧ-инфекцией в условиях мегаполиса: автореф. дис. … д-ра мед. наук. ‒ М., 2019. ‒ 47 с.

5. Синицын М. В., Решетников М. Н., Барский Б. Г., Абу Аркуб Т. И., Позднякова Е. И., Плоткин Д. В. Диагностические операции у больных с ВИЧ-инфекцией с поражением органов грудной клетки // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. ‒ 2018. ‒ 10, № 2. ‒ С. 96-102.

6. Синицын М. В., Решетников М. Н., Соколина И. А., Плоткин Д. В., Вирский Н. Ю., Барский Б. Г. Диагностика заболеваний органов грудной клетки у больных ВИЧ-инфекцией с помощью видеоэндохирургических технологий // Эндоскопическая хирургия. ‒ 2017. ‒ Т. 2, № 23. ‒ С. 17-22. doi.org/10.17116/endoskop201723217-22.

7. Слогоцкая Л. В. Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным, содержащим рекомбинантный белок CFP10-ESAT6, в диагностике, выявлении и определении активности туберкулезной инфекции: автореф. дис. … д-ра мед. наук. – М., 2011. – 45 с.

8. Слогоцкая Л. В., Богородская Е. М., Сенчихина О. Ю., Никитина Г. В., Кудлай Д. А. Формирование групп риска заболевания туберкулезом при различных иммунологических методах обследования детского населения // Российский педиатрический журнал. ‒ 2017. ‒ Т. 20, № 4. ‒ С. 207-213.

9. Слогоцкая Л. В., Богородская Е. М., Синицын М. В., Кудлай Д. А., Шамуратова Л. Ф., Севостьянова Т. А. Скрининг туберкулезной инфекции с различными вариантами применения аллергена туберкулезного рекомбинантного у детей и подростков в г. Москве // Педиатрия им. Г. Н. Сперанского. ‒ 2020. ‒ Т. 99, № 2. ‒ С. 136-146. doi: 10.24110/0031-403X-2020-99-2-136-146.

10. Слогоцкая Л. В., Кочетков Я. А., Сенчихина О. Ю., Сельцовский П. П., Литвинов В. И. Динамика кожной пробы (диаскинтест) у детей при оценке активности туберкулезной инфекции // Туб. и болезни легких. ‒ 2011. ‒ № 2. ‒ С. 59-63.

11. Слогоцкая Л. В., Сенчихина О. Ю., Никитина Г. В., Богородская Е. М. Эффективность кожного теста с аллергеном туберкулезным рекомбинантным при выявлении туберкулеза у детей и подростков Москвы в 2013 г. // Педиатрическая фармакология. ‒ 2015. ‒ Т. 12, № 1. ‒ С. 99-103.

12. Фролова К. С., Борисов С. Е., Слуцкая О. М. Туберкулез у больных с воспалительными заболеваниями на фоне лечения ингибиторами ФНО-альфа // Туберкулез и социально значимые заболевания. ‒ 2018. ‒ № 2. ‒ С. 31-41.

13. American Thoracic Society; CDC; Infectious Diseases Society of America. Treatment of tuberculosis. MMWR Recomm Rep. ‒ 2003. ‒ № 52. ‒ Р. 1-77.

14. Ankrah A. O., Glaudemans A. W. J. M., Maes A., Van de Wiele C., Dierckx R. A. J. O., Vorster M., Sathekge M. M. Tuberculosis // Semin. Nucl. Med. ‒ 2018. ‒ № 48. ‒ Р. 108-130.

15. Auguste P., Tsertsvadze A., Pink J., Courtney R., Seedat F., Gurung T. Accurate diagnosis of latent tuberculosis in children, people who are immunocompromised or at risk from immunosuppression and recent arrivals from countries with a high incidence of tuberculosis: systematic review and economic evaluation // Health Technology Assessment. ‒ 2016. ‒ Vol. 20, № 38. ‒ Р. 1-678. doi: 10.3310/hta20380.

16. Bajenoff M., Egen J. G., Koo L. Y., Laugier J. P., Brau F., Glaichenhaus N. et al. Stromal cell networks regulate lymphocyte entry, migration, and territoriality in lymph nodes // Immunity. ‒ 2006. ‒ Vol. 25, № 6. ‒ Р. 989-1001. https:// doi.org/10.1016/j.immuni.2006.10.011 PMID: 17112751.

17. Bajenoff M., Granjeaud S., Guerder S. The strategy of T cell antigen-presenting cell encounter in antigen-draining lymph nodes revealed by imaging of initial T cell activation // J. Exp. Med. ‒ 2003. ‒ Vol. 198, № 5. ‒ Р. 715-724. https://doi.org/10.1084/jem.20030167 PMID: 12953093.

18. Basaraba R. J., Dailey D. D., McFarland C. T., Shanley C. A., Smith E. E., McMurray D. N. et al. Lymphadenitis as a major element of disease in the guinea pig model of tuberculosis // Tuberculosis (Edinb). ‒ 2006. ‒ Vol. 86, № 5. ‒ Р. 386-394. https://doi.org/10.1016/j.tube.2005.11.003 PMID: 16473044.

19. Basaraba R. J., Smith E. E., Shanley C. A., Orme I. M. Pulmonary lymphatics are primary sites of Mycobacterium tuberculosis infection in guinea pigs infected by aerosol. Infect Immun. ‒ 2006. ‒ Vol. 74, № 9. ‒ Р. 5397-5401. https://doi.org/10.1128/IAI.00332-06 PMID: 16926435.

20. Blacklock J. W. The Primary Lung Focus of Tuberculosis in Children // Proc. R. Soc. Med. ‒ 1932. ‒ Vol. 25, № 5. ‒ Р. 725-733. PMID: 19988654.

21. Cadena A. M., Fortune S. M.., F lynn JL. Heterogeneity in tuberculosis. Nat Rev Immunol. ‒ 2017. ‒ Vol. 17, № 11. ‒ Р. 691-702. https://doi.org/10.1038/nri.2017.69 PMID: 28736436.

22. Capuano S. V. 3rd, Croix D. A., Pawar S., Zinovik A., Myers A., Lin P. L. et al. Experimental Mycobacterium tuberculosis infection of cynomolgus macaques closely resembles the various manifestations of human M. tuberculosis infection // Infect. Immun. ‒ 2003. ‒ Vol. 71, № 10. ‒ Р. 5831-5844. https://doi.org/10.1128/IAI.71.10.5831- 5844.2003 PMID: 14500505.

23. Cardona P. A dynamic reinfection hypothesis of latent tuberculosis infection // Infection. ‒ 2009. ‒ Vol. 37, № 2. ‒ Р. 80-86.

24. Chang K. C., Leung C. C., Yew W. W., Ho S. C., Tam C. M. A nested case-control study on treatment-related risk factors for early relapse of tuberculosis // Am. J. Respir. Crit. Care Med. ‒ 2004. ‒ Vol. 170, № 10. ‒ Р. 1124-1130. https://doi.org/10.1164/rccm.200407-905OC PMID: 15374844.

25. Chen R. Y., Dodd L. E., Lee M., Paripati P., Hammoud D. A., Mountz J. M. et al. PET/CT imaging correlates with treatment outcome in patients with multidrug-resistant tuberculosis // Sci. Transl. Med. ‒ 2014. ‒ № 6. ‒ 265ra166.

26. Chtanova T., Han S. J., Schaeffer M., van Dooren G. G., Herzmark P., Striepen B. et al. Dynamics of T cell, antigen-presenting cell, and pathogen interactions during recall responses in the lymph node // Immunity. ‒ 2009. ‒ Vol. 31, № 2. ‒ Р. 342-355. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2009.06.023 PMID: 19699173.

27. Cohen A., Mathiasen V. D., Schön T., Wejse C. The global prevalence of latent tuberculosis: a systematic review and meta-analysis // Eur. Respir. J. ‒ 2019. ‒ Vol. 54, № 3. pii: 1900655. doi: 10.1183/13993003.00655-2019.

28. Coleman M. T., Chen R. Y., Lee M., Lin P. L., Dodd L. E., Maiello P. et al. PET/CT imaging reveals a therapeutic response to oxazolidinones in macaques and humans with tuberculosis // Sci. Transl. Med. ‒ 2014. ‒ Vol. 6, № 265. ‒ 265ra167. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3009500 PMID: 25473035.

29. Coleman M. T., Maiello P., Tomko J., Frye L. J., Fillmore D., Janssen C. et al. Early Changes by (18) Fluorodeoxyglucose positron emission tomography coregistered with computed tomography predict outcome after Mycobacterium tuberculosis infection in cynomolgus macaques // Infect. Immun. ‒ 2014. ‒ Vol. 82, № 6. ‒ Р. 2400-2404. https://doi.org/10.1128/IAI.01599-13 PMID: 24664509.

30. Diedrich C. R., O’Hern J., Gutierrez M. G., Allie N., Papier P., Meintjes G. et al. Relationship between HIV Coinfection, Interleukin 10 Production, and Mycobacterium tuberculosis in human lymph node granulomas // J. Infect. Dis. ‒ 2016. ‒ Vol. 214, № 9. ‒ Р. 1309-1318. https://doi.org/10.1093/infdis/jiw313 PMID: 27462092.

31. Diel R., Loddenkemper R., Nienhaus A. Evidence ‒ based comparison of commercial interferon-gamma release assay for detecting active TB: a metaanalysis // Chest. ‒ 2010. ‒ Vol. 137, № 4. ‒ Р. 952-968. doi: 10.1378/chest.09-2350.

32. Doherty Т., Wallis R., Zumla A. Biomarkers for tuberculosis disease status and diagnosis // Curr. Opin. Pulm. Med. ‒ 2009. ‒ Vol. 15, № 3. ‒ Р. 181-187.

33. Dowdy D. W., Basu S., Andrews J. R. Is passive diagnosis enough? The impact of subclinical disease on diagnostic strategies for tuberculosis // Am. J. Respir. Crit. Care Med. ‒ 2013. ‒ № 187. ‒ Р. 543-551. [PubMed: 23262515].

34. Dutta N. K., Karakousis P. C. Latent tuberculosis infection: myths, models, and molecular mechanisms // Microbiol. Mol. Biol. Rev. ‒ 2014. ‒ Vol. 78, № 3. ‒ Р. 343-371. https://doi.org/10.1128/MMBR.00010- 14 PMID: 25184558.

35. Esmail H., Barry C. E., Young D. B., Wilkinson R. J. The ongoing challenge of latent tuberculosis // Philos. Trans. R Soc. B Biol. Sci. ‒ 2014. ‒ Vol. 369, № 1645. ‒ Р. 20130437-20130437.

36. Esmail H., Lai R. P., Lesosky M., Wilkinson K. A., Graham C. M., Coussens A. K. et al. Characterization of progressive HIV-associated tuberculosis using 2-deoxy-2-[18F]fluoro-D-glucose positron emission and computed tomography // Nat. Med. ‒ 2016. ‒ Vol. 22, № 10. ‒ Р. 1090-1093. https://doi.org/10.1038/nm.4161 PMID: 27595321.

37. Fox W., Ellard G., Mitchison D. Studies on the treatment of tuberculosis under taken by the British Medical Research Council tuberculosis units, 1946-1986, with relevant subsequent publications // Int. J. Tuberc. Lung. Dis. ‒ 1999. ‒ № 3. ‒ Р. 231-279.

38. French M. A. HIV/AIDS: immune reconstitution inflammatory syndrome: a reappraisal // Clin. Infect. Dis. ‒ 2009. ‒ № 48. ‒ Р. 101-107.

39. Ganchua S. K. C., Cadena A. M., Maiello P., Gideon H. P., Myers A. J. et al. Lymph nodes are sites of prolonged bacterial persistence during Mycobacterium tuberculosis infection in macaques // PLOS Pathogens. ‒ 2018. ‒ Vol. 14, № 11. ‒ e1007337. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1007337.

40. Ghesani N., Patrawalla A., Lardizabal A., Salgame P. Increased cellular activity in thoracic lymph nodes in early human latent tuberculosis infection // Am. J. Respir. Crit. Care Med. ‒ 2014. ‒ Vol. 189, № 6. ‒ Р. 748-750. https://doi.org/10.1164/rccm.201311-1976LE PMID: 24628316.

41. Gray E. E., Cyster J. G. Lymph node macrophages // J. Innate Immun. ‒ 2012. ‒ Vol. 4, № 5-6. ‒ Р. 424-436. https://doi.org/ 10.1159/000337007 PMID: 22488251.

42. Gretz J. E., Norbury C. C., Anderson A. O., Proudfoot A. E., Shaw S. Lymph-borne chemokines and other low molecular weight molecules reach high endothelial venules via specialized conduits while a functional barrier limits access to the lymphocyte microenvironments in lymph node cortex // J. Exp. Med. ‒ 2000. ‒ Vol. 192, № 10. ‒ Р. 1425-1440. PMID: 11085745.

43. Hickman H. D., Takeda K., Skon C. N., Murray F. R., Hensley S. E., Loomis J. et al. Direct priming of antiviral CD8+ T cells in the peripheral interfollicular region of lymph nodes // Nat. Immunol. ‒ 2008. ‒ Vol. 9, № 2. ‒ Р. 155-165. https://doi.org/10.1038/ni1557 PMID: 18193049.

44. Hunter R. L. Pathology of post primary tuberculosis of the lung: An illustrated critical review. Tuberculosis. ‒ 2011. ‒ № 91. ‒ Р. 497-509. [PubMed: 21733755].

45. Junt T., Moseman E. A., Iannacone M., Massberg S., Lang P. A., Boes M. et al. Subcapsular sinus macrophages in lymph nodes clear lymph-borne viruses and present them to antiviral B cells // Nature. ‒ 2007. ‒ Vol. 450, № 7166. ‒ Р. 110-114. https://doi.org/10.1038/nature06287 PMID: 17934446.

46. Lerner T. R., de Souza Carvalho-Wodarz C., Repnik U., Russell M. R., Borel S., Diedrich C. R. et al. Lymphatic endothelial cells are a replicative niche for Mycobacterium tuberculosis // J. Clin. Invest. ‒ 2016. ‒ Vol. 126, № 3. ‒ Р. 1093-1108. https://doi.org/10.112/JCI83379 PMID: 26901813.

47. Lin P. L., Coleman T., Carney J. P., Lopresti B. J., Tomko J., Fillmore D. et al. Radiologic responses in cynomolgus macaques for assessing tuberculosis chemotherapy regimens // Antimicrob Agents Chemother. ‒ 2013. ‒ Vol. 57, № 9. ‒ Р. 4237-4244. https://doi.org/10.1128/AAC.00277-13 PMID: 23796926.

48. Lin P. L., Dartois V., Johnston P. J., Janssen C., Via L., Goodwin M. B. et al. Metronidazole prevents reactivation of latent Mycobacterium tuberculosis infection in macaques // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. ‒ 2012. ‒ Vol. 109, № 35. ‒ Р. 14188-14193. https://doi.org/10.1073/pnas.1121497109 PMID: 22826237.

49. Lin P. L., Ford C. B., Coleman M. T., Myers A. J., Gawande R., Ioerger T. et al. Sterilization of granulomas is common in active and latent tuberculosis despite within-host variability in bacterial killing // Nat Med. ‒ 2014. ‒ Vol. 20, № 1. ‒ Р. 75-79. https://doi.org/10.1038/nm.3412 PMID: 24336248.

50. Lin P. L., Maiello P., Gideon H. P., Coleman M. T., Cadena A. M., Rodgers M. A. et al. PET CT identifies reactivation risk in cynomolgus macaques with latent M. tuberculosis // PLoS Pathog. ‒ 2016. ‒ Vol. 12, № 7. ‒ Р. e1005739. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005739 PMID: 27379816.

51. Lin P. L., Myers A., Smith L., Bigbee C., Bigbee M., Fuhrman C. et al. Tumor necrosis factor neutralization results in disseminated disease in acute and latent Mycobacterium tuberculosis infection with normal granuloma structure in a cynomolgus macaque model // Arthritis Rheum. ‒ 2010. ‒ Vol. 62, № 2. ‒ Р. 340-350. https:// doi.org/10.1002/art.27271 PMID: 20112395.

52. Lin P. L., Pawar S., Myers A., Pegu A., Fuhrman C., Reinhart T. A. et al. Early events in Mycobacterium tuberculosis infection in cynomolgus macaques // Infection and immunity. ‒ 2006. ‒ Vol. 74, № 7. ‒ Р. 3790-3803. https://doi.org/10.1128/IAI.00064-06 PMID: 16790751.

53. Lin P. L., Rodgers M., Smith L., Bigbee M., Myers A., Bigbee C., et al. Quantitative comparison of active and latent tuberculosis in the cynomolgus macaque model. Infect Immun. ‒ 2009. ‒ Vol. 77, № 10. ‒ Р. 4631-4642. https://doi.org/10.1128/IAI.00592-09 PMID: 19620341.

54. Lin P. L., Rutledge T., Green A. M., Bigbee M., Fuhrman C., Klein E. et al. CD4 T cell depletion exacerbates acute Mycobacterium tuberculosis while reactivation of latent infection is dependent on severity of tissue depletion in cynomolgus macaques // AIDS Res. Hum. Retroviruses. ‒ 2012. ‒ Vol. 28, № 12. ‒ Р. 1693-1702. https:// doi.org/10.1089/AID.2012.0028 PMID: 22480184.

55. Loomis H. P. Some facts in the etiology of tuberculosis, evidenced by thirty autopsies and experiments upon animals // Med. Record. ‒ 1890. ‒ Vol. 38, № 25. ‒ Р. 689.

56. Maiello P., DiFazio R. M., Cadena A. M., Rodgers M. A., Lin P. L., Scanga C. A. et al. Rhesus macaques are more susceptible to progressive tuberculosis than cynomolgus macaques: A quantitative comparison // Infect. Immun. ‒ 2017. https://doi.org/10.1128/IAI.00505-17 PMID: 28947646.

57. Martinez V., Castilla-Lievre M. A., Guillet-Caruba C., Grenier G., Fior R., Desarnaud S., Doucet-Populaire F., Boué F. (18)F-FDG PET/CT in tuberculosis: an early non-invasive marker of therapeutic response // Int. J. Tuberc. Lung Dis. ‒ 2012. ‒ № 16. ‒ Р. 1180-1185.

58. Mattila J. T., Beaino W., Maiello P., Coleman M. T., White A. G., Scanga C. A. et al. Positron emission tomography imaging of macaques with tuberculosis identifies temporal changes in granuloma glucose metabolism and integrin α4β1-expressing immune cells // J. Immunol. ‒ 2017. ‒ Vol. 199, № 2. ‒ Р. 806-815. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1700231 PMID: 28592427.

59. Menzies D., Pai M., Comstock G. Meta-analysis: new tests for the diagnosis of latent tuberculosis infection: areas of uncertainty and recommendations for research // Ann. Intern. Med. ‒ 2007. ‒ № 146. ‒ Р. 340-354.

60. Mitchison D. Basic mechanisms of chemotherapy // Chest. ‒ 1979. ‒ Vol. 76, № 6. ‒ Р. 771-781.

61. Munoz-Elias E. J., Timm J., Botha T., Chan W. T., Gomez J. E., McKinney J. D. Replication dynamics of Mycobacterium tuberculosis in chronically infected mice // Infect. Immun. ‒ 2005. ‒ Vol. 73, № 1. ‒ Р. 546-551. https://doi.org/10.1128/IAI.73.1.546-551.2005 PMID: 15618194.

62. Myers A. J., Marino S., Kirschner D. E., Flynn J. L. Inoculation dose of Mycobacterium tuberculosis does not influence priming of T cell responses in lymph nodes // J. Immunol. ‒ 2013. ‒ Vol. 190, № 9. ‒ Р. 4707-4016. https://doi.org/ 10.4049/jimmunol.1203465 PMID: 23547119.

63. Myers J. A. The natural history of tuberculosis in the human body; forty-five years of observation // JAMA. ‒ 1965. ‒ Vol. 194, № 10. ‒ Р. 1086-1092. PMID: 5294688.

64. O’Garra A., Redford P. S., McNab F. W., Bloom C. I., Wilkinson R. J., Berry M. P. The immune response in tuberculosis // Ann. Rev. Immunol. ‒ 2013. ‒ № 31. ‒ Р. 475-527. Epub 2013/03/23. https://doi.org/10.1146/annurevimmunol-032712-095939 PMID: 23516984.

65. Ordway D., Palanisamy G., Henao-Tamayo M., Smith E. E., Shanley C., Orme I. M. et al. The cellular immune response to Mycobacterium tuberculosis infection in the guinea pig // J. Immunol. ‒ 2007. ‒ Vol. 179, № 4. ‒ Р. 2532-2541. Epub 2007/08/07. PMID: 17675515.

66. Peto H. M., Pratt R. H., Harrington T. A., LoBue P. A., Armstrong L. R. Epidemiology of extrapulmonary tuberculosis in the United States, 1993-2006 // Clin. Infect. Dis. ‒ 2009. ‒ Vol. 49, № 9. ‒ Р. 1350-1357. https://doi.org/10.1086/605559 PMID: 19793000.

67. Phuah J. Y., Mattila J. T., Lin P. L., Flynn J. L. Activated B cells in the granulomas of nonhuman primates infected with Mycobacterium tuberculosis// Am. J. Pathol. ‒ 2012. ‒ Vol. 181, № 2. ‒ Р. 508-514. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2012.05.009 PMID: 22721647.

68. Prakasha S. R., Suresh G., D’Sa I. P., Shetty S. S., Kumar S. G. Mapping the pattern and trends of extrapulmonary tuberculosis // J. Glob. Infect. Dis. ‒ 2013. ‒ Vol. 5, № 2. ‒ Р. 54-59. https://doi.org/10.4103/0974-777X.112277 PMID: 23853432.

69. Rangaka M., Wilkinson K., Glynn J., Ling D., Menzies D., Mwansa-Kambafwile J. et al. Predictive value of interferon-γ release assays for incident active tuberculosis: a systematic review and metaanalysis // Lancet Infect. Dis. ‒ 2012. ‒ Vol. 12, № 1. ‒ Р. 45-55. doi: 10.1016/S1473-3099(11)70210-9.

70. Reiley W. W., Calayag M. D., Wittmer S. T., Huntington J. L., Pearl J. E., Fountain J. J. et al. ESAT-6-specific CD4 T cell responses to aerosol Mycobacterium tuberculosis infection are initiated in the mediastinal lymph nodes // Proc Natl Acad Sci U S A. ‒ 2008. ‒ Vol. 105(31). – P.10961–10966. https://doi.org/10.1073/pnas.0801496105 PMID: 18667699.

71. Roozendaal R., Mempel T. R., Pitcher L. A., Gonzalez S. F., Verschoor A., Mebius R. E. et al. Conduits mediate transport of low-molecular-weight antigen to lymph node follicles. Immunity. ‒ 2009. ‒ Vol. 30, № 2. ‒ Р. 264-276. https://doi.

72. org/10.1016/j.immuni.2008.12.014 PMID: 19185517.

73. Samstein M., Schreiber H. A., Leiner I. M., Susac B., Glickman M. S., Pamer E. G. Essential yet limited role for CCR2(+) inflammatory monocytes during Mycobacterium tuberculosis-specific T cell priming // Elife. ‒ 2013. ‒ № 2. ‒ Р. e01086. https://doi.org/10.7554/eLife.01086 PMID: 24220507.

74. Sathekge M., Ankrah A., Lawal I., Vorster M. Monitoring Response to Therapy // Semin. Nucl. Med. ‒ 2018. ‒ № 48. ‒ Р. 166-181.

75. Sathekge M., Maes A., D'Asseler Y., Vorster M., Gongxeka H., Van de Wiele C. Tuberculous lymphadenitis: FDG PET and CT findings in responsive and nonresponsive disease // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. ‒ 2012. ‒ № 39. ‒ Р. 1184-1190.

76. Sathekge M., Maes A., Kgomo M., Pottel H., Stolz A., Van De Wiele C. FDG uptake in lymph-nodes of HIV+ and tuberculosis patients: implications for cancer staging Q // J. Nucl. Med. Mol. Imaging. ‒ 2010. ‒ № 54. ‒ Р. 698-703.

77. Sathekge M., Maes A., Kgomo M., Stoltz A., Van de Wiele C. Use of 18F-FDG PET to predict response to first-line tuberculostatics in HIV-associated tuberculosis // J. Nucl. Med. ‒ 2011. ‒ № 52. ‒ Р. 880-885.

78. Scanga C. A., Flynn J. L. Modeling tuberculosis in nonhuman primates // Cold Spring Harb Perspect Med. ‒ 2014. ‒ Vol. 4, № 12. ‒ Р. a018564. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a018564 PMID: 25213189.

79. Sixt M., Kanazawa N., Selg M., Samson T., Roos G., Reinhardt D. P. et al. The conduit system transports soluble antigens from the afferent lymph to resident dendritic cells in the T cell area of the lymph node // Immunity. ‒ 2005. ‒ Vol. 22, № 1. ‒ Р. 19-29. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2004.11.013 PMID: 15664156.

80. Slight S. R., Rangel-Moreno J., Gopal R., Lin Y., Fallert Junecko B. A., Mehra S. et al. CXCR5(+) T helper cells mediate protective immunity against tuberculosis // J. Clin. Invest. ‒ 2013. ‒ Vol. 123, № 2. ‒ Р. 712-726. https://doi.org/10.1172/JCI65728 PMID: 23281399.

81. Slogotskaya L. V., Bogorodskaya E., Senchihina O., Nikitina G., Litvinov V., Seltsovsky P., Kudlay D. A., Nikolenko N. Effectiveness of the detection of LTBI infection using tuberculin skin test and CFP-10- ESAT-6 allergen in children and adults in Moscow, 2013-2014 // Int. J. Tuberc. Lung Disease. ‒ 2015. ‒ Vol. 19, № 12, S2. ‒ Р. S199.

82. Slogotskaya L. V., Bogorodskaya E., Sentchichina O., Ivanova D., Nikitina G., Litvinov V., Seltsovsky, P., Kudlay D. A., Nikolenko N., Borisov S. Effectiveness of tuberculosis detection using a skin test with allergen recombinant (CFP-10-ESAT-6) in children // Eur. Respir. J. ‒ 2015. ‒ Vol. 46 (S59). ‒ РА4524.

83. Slogotskaya L. V., Kudlay D. A., Litvinov V., Seltsovsky P., Kochetkov Y. Dynamics of Diaskintest (recombinant protein CFP10-ESAT6) reactions in children at repeated tests // Paediatric Respir. Reviews. – 2011. ‒ Vol. 12, № 1. – P. S73-S74.

84. Slogotskaya L. V., Litvinov V., Kudlay D. A., Ovsyankina E., Seltsovsky P., Ivanova D., Nikolenko N. New skin test with recombinant protein CFP10-ESAT6 in patients (children and adults) with tuberculosis, non-tuberculosis disease and latent TB infection // Eur. Respir. J. ‒ 2012. ‒ Vol. 40 (S56). ‒ Р. 416.

85. Tramontana J. M., Utaipat U., Molloy A., Akarasewi P., Burroughs M. et al. Thalidomide treatment reduces tumor necrosis factor alpha production and enhances weight gain in patients with pulmonary tuberculosis // Mol. Med. ‒ 1995. ‒ № 1. ‒ Р. 384-397. [PubMed: 8521296].

86. Van Deun A., Martin A., Palomino J. C. Diagnosis of drug-resistant tuberculosis: reliability and rapidity of detection // Int. J. Tuberc. Lung Dis. ‒ 2010. ‒ № 14. ‒ Р. 131-140.

87. Wang C. Y. An experimental study of latent tuberculosis // Lancet. ‒ 1916. ‒ Vol. 188, № 4853. ‒ Р. 417-419. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(00)58936-3.

88. Wáng Y. X., Chung M. J., Skrahin A., Rosenthal A., Gabrielian A., Tartakovsky M. Radiological signs associated with pulmonary multi-drug resistant tuberculosis: an analysis of published evidences // Quant. Imaging Med. Surg. ‒ 2018. ‒ № 8. ‒Р. 161-173.

89. WHO. Consensus meeting report: development of a Target Product Profile (TPP) and a framework for evaluation for a test for predicting progression from tuberculosis infection to active disease. – 2017.

90. WHO. Global Tuberculosis Report. ‒ 2017.

91. Wiker H. G., Mustafa T., Bjune G. A. et al. Evidence for waning of latency in a cohort study of tuberculosis // BMC Infect. Dis. ‒ 2010. ‒ № 10. ‒ Р. 37. https://doi.org/10.1186/1471-2334-10-37.

92. Winer-Muram H. T. The solitary pulmonary nodule // Radiology. ‒ 2006. ‒ № 239. ‒ Р. 34-49. https://doi.org/10.1148/radiol.2391050343

93. Wolf A. J., Desvignes L., Linas B., Banaiee N., Tamura T., Takatsu K. et al. Initiation of the adaptive immune response to Mycobacterium tuberculosis depends on antigen production in the local lymph node, not the lungs // J. Exp. Med. ‒ 2008. ‒ Vol. 205, № 1. ‒ Р. 105-115. https://doi.org/10.1084/jem.20071367 PMID: 18158321.

94. World Health Organization: Tuberculosis. Available online: https://www.who.int/news- room/fact-sheets/detail/ tuberculosis. Accessed May 22, 2019.

95. Yu W. Y., Lu P. X., Assadi M., Huang X. L., Skrahin A., Rosenthal, Gabrielian A., Tartakovsky M., Wáng Y. X. Updates on 18F-FDG-PET/CT as a clinical tool for tuberculosis evaluation and therapeutic monitoring // Quant. Imaging. Med. Surg. ‒ 2019. ‒ Vol. 9, № 6. ‒ Р. 1132-1146. doi: 10.21037/qims.2019.05.24.


Для цитирования:


Кудлай Д.А. Биомаркеры и иммунологические тесты. Экспериментально-клинические параллели латентной туберкулезной инфекции. Туберкулез и болезни легких. 2020;98(8):63-74. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-8-63-74

For citation:


Kuday D.A. Biomarkers and immunological tests. Experimental and clinical parallels of latent tuberculosis infection. Tuberculosis and Lung Diseases. 2020;98(8):63-74. (In Russ.) https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-8-63-74

Просмотров: 314


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2075-1230 (Print)
ISSN 2542-1506 (Online)